HhaI 快速內(nèi)切酶

貨號：F4510S

儲存條件：-20℃

同裂酶：HinP1I, CfoI, AspLEI, Hin6I, HspAI, BstHHI ；注：同裂酶對于不同的甲基化修飾可能具有不同敏感性。

產(chǎn)品組成：

產(chǎn)品簡介：

LabFD™快速內(nèi)切酶是一系列經(jīng)過基因工程重組、能夠在5~15分鐘內(nèi)精確完成DNA切割的高保真限制性內(nèi)切酶，適用于質(zhì)粒DNA、PCR產(chǎn)物或基因組DNA等的快速酶切。LabFD™快速內(nèi)切酶具有如下特點：5~15分鐘內(nèi)即可完成酶切；共用一種酶切Buffer，大大簡化酶切反應體系；良好的酶活冗余度，輕松應對底物過量或困難模板酶切。此外，LABLEAD去磷酸化、連接試劑在LabFD™酶切Buffer中具有100%活性，支持一管化反應，提升“酶切-修飾-連接"的體驗。

LabFD™ Color Buffer 包括紅色和黃色示蹤染料，可將產(chǎn)物直接用于凝膠電泳。LabFD™ Color Buffer 的紅色染料與 2500 bp雙鏈DNA片段在1%瓊脂糖凝膠中遷移速率接近；黃色染料與10 bp 雙鏈 DNA 片段在 1% 瓊脂糖凝膠中遷移速率接近。

建議反應條件：

1×LabFD™緩沖液；37℃溫育；參照“DNA快速酶切流程"配制反應體系

失活條件：80℃溫育 20 min。

質(zhì)量控制

功能活性檢測

37℃下，在20μl反應體系中，1μl LabFD™ HhaI能夠在15min內(nèi)wan全消化1μg λDNA。

超長時間溫育檢測

37℃下，在20μl反應體系中，將 1 μl LabFD™ HhaI與 1 μg λDNA共同溫育3 h，未檢測到其他核酸酶污染或星號活性引起的底物非特異性降解。更長時間酶切可能出現(xiàn)星號活性。

酶切-連接-再酶切檢測

37℃下，使用10倍酶量的 LabFD™ HhaI 消化 DNA 底物，回收酶切產(chǎn)物，在22℃下使用 Fast T4 DNA Ligase可以將超過95% 酶切產(chǎn)物重新連接?？梢灾匦虑虚_的酶切產(chǎn)物重新連接。將連接產(chǎn)物再次回收后，使用相同的內(nèi)切酶可以重新切開95% 以上的連接產(chǎn)物。

使用方法

1. DNA 快速酶切流程

1) 在冰上按如下建議的加樣順序配制反應體系：

 a注：本體系適用于經(jīng)過純化的PCR產(chǎn)物酶切，未純化的PCR具備一定的離子強度，10xLabFD^TMbuffer加入量可適當減少至2μl。但由于DNA聚合酶同時具有外切酶活性，會影響酶切產(chǎn)物，因此如下一步需進行克隆等操作，建議酶切前對PCR產(chǎn)物進行純化。

2) 輕柔吸打或輕彈管壁以混勻（切勿渦旋），然后瞬時離心以收集掛壁液滴；

3) 37℃溫育15min（質(zhì)粒），或15~30min（PCR產(chǎn)物），或30~60min（基因組DNA）；

4) 80℃溫育20min即可使酶失活，停止反應（可選）。

5) 如果使用LabFD™ Color Buffer進行酶切反應，得到的產(chǎn)物可以直接進行上樣電泳。

2. 雙酶切或多酶切

1) 每種快速內(nèi)切酶的用量為1μl，并根據(jù)需要適當擴大反應體系；

2) 所有快速內(nèi)切酶的體積總和不得超過總反應體系的1/10；

3) 如果所用的幾種快速內(nèi)切酶的最適反應溫度不同，應先以最適溫度低的酶開始酶切，再添加最適溫度較高的酶，在其最適反應溫度下進行酶切反應。

3. 適用于質(zhì)粒的擴大反應體系

注：如果總反應體系大于20ul，應適當增加溫育時間，盡量使用水浴、金屬浴或沙浴。

不同DNA中的酶切位點數(shù)量

甲基化修飾影響

在不同反應緩沖液中的活性

注：活性數(shù)據(jù)來自LABLEAD限制酶標準反應體系下的檢測。